Матричный синтез белка на рибосоме
Лекция 9. Матричный синтез белка на рибосоме. Синтез полипептидов на рибосоме У прокариот перед каждым геном и соответ-ственно в тРНК перед копией каждого гена имеется лидерная последовательность. Она может быть разного размера (до 160 нукл.) и разной первичной структуры, но обязательно содержит полипуриновую последовательность Шайна-Дальгарно, которая комплементарна 3'-концевому участку 16S гРНК. Комплементарными могут быть 3-9 нуклеотидов. Назначение комплементарного взаимодействия3'-концевого участка 16SrРНК и последовательности Шайна-Дальгарно - правильная установка инициирующего кодона AUG на малой субъединице рибосомы. Инициирующий кодон находится на расстоянии 3-10 нукл. от последова-тельности Шайна-Дальгарно. К малой субъединице, на которой уже находится mРНК, подходит формилметиониновая tPHK, соединенная с формилметионином. В результате образуется инициаторный комплекс: 30S субъединица рибосомы + тРНК + формилметионовая tPHK-форлшлметионин. Затем происходит ассоциация рибосомы. При этом изменяется конформация 16SrРНК и нарушается связь между ней и последователь-ностью Шайна-Дальгарно. Аминоацильный конец формилметиониновой tPHK оказывается в Р-центре. Второй кодон гена оказывается в Асп-центре. Соответствующая ему аминоацил-tPHK устанавливается таким образом, что ее аминоацильный конец попадает в А-центр. Пептидилтрансфераза отрывает формилметионин в Р-центре и переносит его в А-центр. Образуется пептидная связь между формилметионином и аминоацил-tPHK. Рибосома претерпевает конформационные изменения и сдвигается на один кодон. Формилметиониновая rРНК покидает рибосому. Второй кодон оказывается напротив Р-центра. Сюда же переходит tPHK, несущая на хвосте дипептид. В Асп-центр попадает третий кодон, а в А-центр очередная аминоацил-tPHK. Теперь в Р-центре отрывается дипептид, переносится в А-центр и соединяется с третьей аминоацил-tPHK. Так продолжается до тех пор, пока в Асп-центр не приходит терминирующий кодон. Полипептид отрывается в Р-центре, переносится в А-центр и, т.к. присоединиться ему не к чему, он отваливается от рибосомы. Рибосома диссоциирует и малая субъединицасканирует mРНК. Invivoна каждой стадии (образования инициаторного комплекса, инициации элонгации и терминации) участвуют различные белковые факторы, которые препятствуют посадке на рибосому деацилированных rРНК или запрещают посадку формилметиониновой-tPHK в А-центр. На всех этапах принимают участие молекулы ГТФ, которые дефосфорилируются. Смысл гидролиза ГТФ не в отдаче энергии, а в свидетельстве того, что данный этап трансляции пройден. Регуляция образования рибосомных РНК и белков Е.соli Ежеминутно в E.coli образуется около 500 рибосом. Имеется 7 оперонов, в которых закодированы rРНК (всего 3 разных rРНК х 7 оперонов = 21 ген). В формировании рибосом участвуют 52 различных белка, а значит 52 гена, их кодирующих. В итоге, 73 гена должны работать координирование, чтобы не было избытка белков или rРНК. Вначале образуется про-rPHK, которая метилируется и процессируется (т.е. "созревает"). Количество rРНК регулируется количеством рибосомных оперонов, скоростью ilkтранскрипции и работой ферментов метилаз и эндонуклеаз. Имеется 7 разных оперонов, в которых закодированы рибосомные белки. Регуляция каждого из них осуществляется отдельно. α-оперон регулируется белком S4. Если в клетке имеется свободная 16SrРНК, то S4 связывается с ней (1). Если же 16SrРНК не хватает, то он связывается с mРНК, считывающейся с данного оперона (2). Причем связывается в районе лидера и тем самым мешает трансляции. Таким образом, осущес-твляется регуляция на уровне трансляции. Оперон S10 регулируется белком L4. РНК-полимераза синтезирует первую лидерную последо-вательность, длиной 140 нукл. Если 23SrРНК не хватает (2), то белку L4 не с чем соединяться, и он взаимодействует с лидер-ной последовательностью, придавая ей такую кон-формацию, которая не позволяет РНК-полимеразе продолжать транскрипцию. В результате синтез тРНК обрывается на первом же лидере (2). Регуляция на уровне транскрипции. Оперон σ. В этом опероне закодированы белки, имеющие принципиальное значение для инициации транскрипции (σ - фактор), инициации репликации (dnaG -праймаза) и инициации трансляции (белок S21). Каждый белок нужен в разном количестве. S21 ~ 50000 копий, dnaG - 50, СГ- фактор ~ 5000. Между геном S21 и геном dnaG есть слабый терминатор транскрипции. Ген dnaG имеет инициирующий кодон ГУГ (а не АУГ), который гораздо хуже узнается рибосомой и реже, чем АУГ инициирует трансляцию. Аттенуация (ослабление) Рассмотрим систему аттенуации на примере триптофанового оперона E.coli. Этот оперон регулируется по схеме негативной репрессии. При недостатке в клетке триптофана оперон открыт. При увеличении концентрации триптофана РНК-полимераза не доходит даже до первого цистрона. Между оператором и первым цистроном есть протяженный участок (162 п.н.), который содержит последовательность Шайна-Дальгарно. Она расположена ближе к цистрону, все остальное же представляет собой аттенуатор. В этом районе происходит прекращение транскрипции и отсоединение РНК-молимеразы от ДНК. Это сделано для того, чтобы остановить РНК-полимеразу, которая уже в пути, в том случае, если концентрация триптофана в клетке к этому моменту повысилась. В аттенуаторе выделяют 4 последователь-ности, частично комплементарные друг другу. В последовательности 1 закодирован 14-и членный пептид (Met-Lys-Ala-Ile-Phe-Val-Leu-Lys-Gly-Trp-Trp-Arg-Thr-Ser). На 10-ом и 11-ом месте в нем стоит триптофан. Если триптофан в клетке есть и доступен, то рибосома с легкостью преодолевает участок 1 и стерически мешает образованию шпильки (2)-(3). Тогда образуется шпилька (3)-(4), которая узнается РНК-полимеразой как сигнал прекращения транскрипции. Синтез mРНК обрывается. Если триптофан недоступен, то рибосома застревает на участке 1 и образуется шпилька (2)-(3). В этом случае не может образоваться шпилька (3)-(4). Сигнала для прекращения синтеза mРНК нет. Все синтезируемые полипептиды прока-риот на N-конце несут формилметионин. В 20% случаев он отщепляется, а в 80% отщеп-ляется только формильная группа и на N конце остается метионин. Источники: Дымшиц Г.М. Молекулярная биология: http://www.medliter.ru/?page=get&id=012131 Ваша оценка:
|